动物转基因技术----干细胞显微注射法模块采购
动物转基因技术----干细胞显微注射法模块采购
项目名称 | 动物转基因技术----干细胞显微注射法模块 | 项目编号 | JJ 点击查看>> |
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公告开始日期 | 点击查看>> * : * : * | 公告截止日期 | 点击查看>> * : * : * |
采购单位 | (略) | 付款方式 | 货到验收合格后付全款 |
联系人 | 登录后可见 | 联系电话 | 登录后可见 |
签约时间要求 | 成交后3天 | 到货时间要求 | 签约后 * 天 |
预算总价 | ¥ 点击查看>> . * | ||
收货地址 | (略) 省 (略) 市浑 (略) 创新路 * 号 | ||
供应商资质要求 | 符合《政府采购法》第 * 十 * 条规定的供应商基本条件 |
采购商品 | 采购数量 | 计量单位 | 所属分类 |
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动物转基因技术虚拟仿真模块 | 1 | 套 | 办公软件 |
品牌 | 莱医特 |
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型号 | 按参数定制 |
预算单价 | ¥ 点击查看>> . * |
技术参数及配置要求 | * 、项目描述 本项目以EGFP为靶基因制备转基因小鼠,旨在融合分子生物学、细胞生物学、基因工程与胚胎工程等学科知识,促进学生掌握转基因小鼠制备的原理与操作过程,培养学生观察能力与思考创造力。 虚拟实验 (略) 流畅, (略) 景将让您可以切身感受体验其中身临其境的奇妙过程。本软件做到融实用性、教育性、娱乐性和趣味性为 * 体的教学方式,要求学生通过在计算机上的操作来学到相关专业技能和知识,系统既好玩、又有趣,还能“涨知识”,提高学生学习兴趣。学生可以虚实结合,反复训练和加强记忆,从而提高学生创新思维及实操技能能力。 * 、项目总体要求 2.1、技术要求: 系统采用B/S架构;PC端支持win7、win * 在内的主流操作系统; (略) 稳定,安全性高。 2.2、设备配置要求: 系 (略) 于CPU不低于i5、内存不低于4G、拥有2G以上独立显卡的台式或笔记本电脑上。 * 、系统性能 1、稳定性: (略) 前采用回归测试、功能测试、压力测试、负载测试、性能测试、易用性测试、安装与反安装测试、回复测试、安全性测试、兼容性测试、内存泄漏测试、比较测试Alpha测试和Beta测试。要求系统能 (略) 稳定,具有较高的系统稳定性。 2、安全性:必须保证系统的安全性,有效解决安全漏洞问题,同时要具有对开发中发现的安全漏洞有进 * 步的改进和完善的功能, 以确保系统安全、可靠,不具有、不传播恶性、破坏性、攻击性的程序代码,自身 (略) 恶性程序攻击,不具有明显漏洞。 3、流畅性:确保系统展示时过程流畅,平滑连续,响应及时。 4、易用性和 (略) 性:系统内嵌提醒帮助机制,在各个子界面中,设计文本提示框等信息。软件采用面向对象设计,操作者通过对话框、菜单等简便的操作,能 (略) 应用;U I界面设计:菜单栏、视图窗口、属性窗口、对话框,满足虚拟实验管理和操作的需要。 * 、系统设计规范 (1)GB 点击查看>> 《计算机软件开发规范》 (2)GB 点击查看>> 《计算机软件产品开发文件编制指南》 (3)GB 点击查看>> 《计算机软件需求说明编制指南》 (4)GB 点击查看>> 《计算机软件测试文件编制规范》 (5)GB/T 点击查看>> 1《软件系统验收规范》 * 、虚拟仿真实验开发内容 ★ * 、提供国家级项目申报页面,可以和实验空间无缝对接数据信息,申报页面包含申报视频、引导视频、 (略) 、项目访问信息、用户使用分数、错误步骤、项目综合评价、申报文档等。 ★ * 、 (略) 现有虚拟仿 (略) 综合管理平台无缝对接数据,包含实验操作记录,实验分数、错误步骤统计等。 ★ * 、项目内容: 1、小鼠超排、交配 ① 小鼠超排 ② 交配老鼠 ③ 检查阴栓,为获取早期胚胎准备 2、体内囊胚获取 拿起 * μl移液器,并调到“ * ”,选择正确的枪头,安装到移液器上。吸取M2培养基,将M2培 (略) 孔培养皿中。重复操作,分别吸取 * 次M2培 (略) 孔培养皿中。打开鼠笼拿出受孕3.5天6周雌鼠,将雌鼠用异氟烷麻醉,进行颈椎脱臼,拿起解剖剪,剪开雌鼠腹腔,剪下雌鼠子宫,放置在干净的纸上。拿起镊子,去掉子宫周围的脂肪组织,将子宫放到 * 个加好M (略) 孔培养皿中。拿起小解剖剪,将两 (略) 剪断。点击1mL注射器,去掉包装袋,点击M2培养基,使用注射器吸取0.5mL备用。拿起弯头镊子, (略) 孔培养皿, (略) 孔培养皿中的子宫。用1mL注射器(已吸好M2培养基)顺着子宫内壁,朝子宫内腔注射M2培养基,冲出胚胎。将含有子 (略) 孔培养皿放在体视镜(带热台)下,拿起吸卵管,在体视镜下,用吸卵管将吸出到 * 个新的加有M (略) 培养皿中(此操作重复两次)。 将换成ES细胞培养基的 * 孔板拿出来放到实验台中,用吸卵管吸起胚胎,将胚胎加到 * 孔板中, * 个胚胎 * 个孔。将加完胚胎的 * 孔板放在培养箱中,出现选择题及评分面板。 3、ES细胞制备 ① 复苏饲养层细胞到 * 孔板 ② 更换ES细胞培养基 ③ 观察(透明带去除) ④ 复苏饲养层细胞到 * 孔板 ⑤ 消化 * 孔板中细胞,重铺到 * 孔板 ⑥ 扩大培养细胞 ⑦ 复苏饲养层细胞到培养皿 ⑧ 更换ES细胞培养基 4、ES细胞电转染 ① 准备待电转的ES细胞 ② 电转Rosa * -EGFP-hygro质粒 ③ 用hygro筛选已导入质粒的ES细胞 ④ 复苏饲养层细胞到 * 孔板 ⑤ 更换电转后的细胞培养基 ⑥ 挑取导入质粒的ES细胞 ⑦ 观察已挑取细胞是否成功表达EGFP ⑧ 扩大培养和冻存 5、EGPF质粒构建 6、 * 倍体制备 点击 * cm培养皿1,把盖子打 (略) 放,拿起 * μL移液器,点击M2培养基,吸取 * μL。点击培养皿1盖子,在盖子中间滴加5滴M2培养基。打开石蜡油,点击培养皿1盖子,倒入石蜡油覆盖M2培养基(不用铺满,覆盖M2培养基液滴即可)。点击 * cm的培养皿2,把盖子打 (略) 放,拿起 * μL移液器 ,点击培养皿2盖子,在盖子中间滴加5滴KSOM培养基,点击打开石蜡油,点击培养皿2盖子,倒入石蜡油覆盖KSOM培养基(不用铺满,覆盖KSOM培养基液滴即可),取2-细胞时期胚胎,拿起 * μL移液器,点击M2培养基,吸取 * μL, (略) 孔培养皿,加入 * μL M2培养基。 拿出受孕1.5天母鼠, (略) 死,将母鼠的输卵管取出,将母鼠输 (略) 培养皿中,用手术剪将母鼠的输卵管剪碎。将中心孔培养皿放置于解剖显微镜下,控制细针,调整胚胎方向,点击按钮,开始电融合细胞,使之成为 * 倍体。用移卵管将胚胎放入 * cm培养皿2(装有KSOM培养基)中的液滴中,洗2次(从 * 个KSOM液滴中转移到新的KSOM液滴中)。点击 * cm培养皿2,将培养皿放入 * ℃培养箱中,在 * ℃培养箱中培养2天,每天观察胚胎,培养至囊胚阶段。出现选择题及评分面板。 7、囊胚移植 选取6-8周龄雌鼠与结扎雄鼠合笼(1:1),第 * 天早上检查交配情况,标记有阴道栓者,将其转移到新的鼠笼,作为代孕鼠。点击电子天平,对 (略) 称量体重。点击烧杯,拿出代孕母鼠,准备注射麻醉。点击1mL注射器,去掉包装袋,点击 * % 的水合氯醛,吸取 * % 的水合氯醛(按5mg/kg的剂量)。点击代孕母鼠,腹腔注射 * % 的水合氯醛麻醉,待代孕鼠完全麻醉后,使用 (略) 被毛,用 * % (略) 擦拭消毒,将 (略) 剪开 * 点,剪开腹膜。从 * 氧化碳培养箱取出囊胚。使用捡卵针吸取胚胎,转移到含有M2培养基的小皿中(不覆盖石蜡油)。使用胚胎移植管吸取胚胎,用镊子小心找到子宫角,划开 * 点小口,迅速将胚胎移植管插入其中,打入胚胎。用同 (略) 另 * 侧子宫的胚胎移植。用缝合针和缝合线,将创口缝合好。将小鼠保温安放。待其苏醒,继续饲养。待代孕鼠生出的小鼠生长 * - * 天,剪0.3cm尾尖,消 (略) PCR鉴定。出现选择题及评分面板。 8、结扎雄鼠/假孕母鼠 选择6周龄雄鼠, (略) 称量体重。点击1ml注射器,去掉包装袋,点击 * % 的水合氯醛(放到1.5ml离心管内),吸取 * % 的水合氯醛(按5mg/kg的剂量),给雄鼠腹腔注射 * % 的水合氯醛麻醉。待雄鼠完全麻醉后,使用 (略) 被毛,用 * % (略) 擦拭消毒。用手术剪刀沿着腹中线靠近生殖器约1. (略) 开 * 个约为1cm长的开口,用弯头眼科镊子在腹腔内两侧各找到白色的脂肪垫,夹着轻轻往外拉,直到睾丸外露,在睾丸的下方可见输精管。将另 * 个眼科镊子在酒精灯上烧红后夹住输精管,将其烧断。用同样的方法将另 * 侧输精管烧断,用缝合针和缝合线,将创口缝合好。将小鼠保温安放。手术 * 周后,挑2-4只6周龄左右的雌鼠与之合笼。 * 个月后雌鼠未见怀孕则标志手术成功。出现选择题及评分面板。 9、小鼠鉴定 * 、原核胚胎获取 注射hCG后 * - * 小时, (略) (略) 死。点击小鼠,将整个鼠体放入 * %酒精中浸泡1分钟。点击烧杯,将浸泡后的母鼠取出,放置于手术台中。用无菌镊子 (略) 皮肤,用手术剪刀剪开皮层,剪出 * 个切口,用镊子撕扯皮肤使肌肉层暴露,并将皮层往两侧放置,用无菌手术剪刀剪开肌肉层,暴露出卵巢和输卵管。用手术剪刀剪开卵巢周围连接(此时不要损坏输卵管),再剪断输卵管与子宫的连接。点击 * mm培养皿(加有M2培养液),将输卵管放入培养皿中,将含有输卵管的小皿转移到体式显微镜下。体式显微镜旁边有热台,热台上准备1个小皿,分别盛装有M2培养基。使用含4#针头的注射器( (略) (略) 理)吸取M2液体,在体式显微镜下将针头插 (略) 开口内,缓缓将M2液体也冲入输卵管中。此时,原核胚胎已被冲入小皿中。 使用捡卵针(直径 点击查看>> um)将原核胚胎转移到 * ul的M2操作液中(小皿中有3个粉红色的 * ul液滴,周围用透明的石蜡油覆。从第 * 个液滴转移到第 * 个液滴,再转移到第 * 个液滴,即洗涤3次),使用捡卵针将原核胚胎转移到含透明质酸酶的EP管中,停留约 * s。拿起 * μL移液器,选择正确的枪头,安装到移液器上。使用 * ul量程移液器轻轻吹打几下,然后使用移液器将EP管中的液体转移到含有2ml M2操作液的小皿中。将颗粒细胞去除的原核胚胎(在去除前,原核胚胎周围有2-3层的颗粒细胞包围)使用捡卵针转移到新的含有 * ul M2操作液的液滴中(小皿中有3个粉红色的 * ul液滴,周围用透明的石蜡油覆。从第 * 个液滴转移到第 * 个液滴,再转移到第 * 个液滴,即洗涤3次)。出现选择题及评分面板。 * 、原核胚胎DNA注射 点击- * 冰箱,拿出原核注射DNA离心管,对原核注射DN (略) 简短离心,离心结束,拿出原核注射DNA离心管。使用无菌的微量加样器,从含DNA的离心管中吸取5 μL DNA,加入到注 (略) ,给显微操作仪安装上持卵针和注射针。先在显微操作仪左边持针器安装上持卵针,再往右边持针器安装上注射针,并调整好高度和角度,使持卵针和注射针保持在相同位置。拿起 * μL移液器,选择正确的枪头,安装到移液器上,吸取M2培养基,点击中皿(6cm),在皿中央加 * 滴约 * μL (根据情况可以多做几个)。使用石蜡油覆盖整个皿,将中皿转移到显微操作仪的操作台上,使用捡卵针吸取 * - * 枚原核胚胎到液滴中央(避免产生气泡)。 将上 * 步的中皿皿盖移动到显微操作仪的热台上,使用低倍物镜对准 (略) 调焦。然后轻轻落下持卵针,微调位置,直到清晰见到针尖为止。然后轻轻落下注射针,微调位置,直到清晰见到针尖为止,并且和持卵针在同 * 高度。然后将镜头转移到工作放大倍数( * ×),并对持卵针和注射针做细微调整。转到注射针手柄,让其撞击 (略) ,让注射针针尖断裂。旋转注射针手柄,观察到有液体流出即可(断口不宜过大,有液体流出即可)。旋转持卵针手柄,吸住 * 个原核胚胎。旋转注射针手柄,将注射针插入到原核胚胎的雄原核位置(小鼠胚胎能看到 * 个类似于细胞核的区域)(图片),转动手柄,吐出DNA。注射完毕后,将中皿皿盖拿到热台(是单独的热台吗?,显微操作仪上的热台)上,用捡卵针将胚胎从小液滴中吸出,转移到含有M * 培养基的小皿中(小皿中含有2mL M * 培养基,并覆盖石蜡油)(这个小皿,是放到体视显微镜下的吗?对)洗涤 * 次后(即连续转移3个小皿),将最后 * 个培养皿放入 * ℃ (略) 培养, (略) 胚胎移植。出现选择题及评分面板。 * 、原核胚胎移植 选取6-8周龄雌鼠与结扎雄鼠合笼(1:1),第 * 天早上检查交配情况,标记有阴道栓者,将其转移到新的鼠笼,作为代孕鼠。拿出代孕母鼠,对 (略) 称量体重。点击烧杯,拿出代孕母鼠,准备注射麻醉。点击1ml注射器,去掉包装袋。点击 * % 的水合氯醛,吸取 * % 的水合氯醛(按5mg/kg的剂量)。点击代孕母鼠,腹腔注射 * % 的水合氯醛麻醉。待代孕鼠完全麻醉后,使用手术 (略) 被毛,用 * % (略) 擦拭消毒。在后正中线与平肋缘水平线交 (略) ,开 * 个约为1cm长的开口,可见到 * 白色的脂肪垫,用弯头镊子将其拉出,使卵巢外露,卵巢下面即可看到输卵管。从 * 氧化碳培养箱 (略) DNA注射的原核胚胎。使用捡卵针吸取胚胎,转移到含有M2培养基的小皿中(不覆盖石蜡油)。使用胚胎移植管吸取胚胎,用镊子小心撕开输卵管与卵巢包膜,找到输卵管开口,迅速将胚胎移植管插入其中,打入胚胎。用同 (略) 另 * 侧输卵管的胚胎移植。用缝合针和缝合线,将创口缝合好。将小鼠保温安放。待其苏醒,继续饲养。待代孕鼠生出的小鼠生长 * - * 天,剪0.3cm尾尖,消 (略) PCR鉴定。出现选择题及评分面板。 * 、原核注射DNA制备 * 、XR编辑器 1)场景库:预置了实验室,野外,海洋 (略) 景; 2)模型库:预置了家具,植物,动物,实验器材,园林建筑,动漫角色等各种模型,支持通用3D模型格式导入; 3)材质库:预置了金属,高光,漫反射等常用材质; 4)预览功能: (略) 景前,可对模型和模型 (略) 预览,支持 * 维旋转查看,动画播放; 5)场景窗口:支持模型的自由搭建,内置移动,旋转,缩放,吸附,视图切换,镜头调节,复制,删除等工具; 6)场景图层: (略) 有物体按树形 (略) 景图层中,支持增删改,显示隐藏等操作; 7)动画: (略) 景物体添加碰撞盒,自定义旋转,位移,缩放。支持碰撞事件; 8)笔刷工具:选中笔刷工具和模型,自由画出路径,会在路径上批量添加模型; 9)可视化指令编程:在逻辑轴上组合各类控制指令,即可实现传统编程才能实现的交互功能。 |
售后服务 | (略) 点:本地( (略) );电话支持:7x * 小时;服务年限:5;服务时限:报修后 * 小时;项目制作过程中, * 方有权根据制作实际情况适当调整技术流程,中保企业须予以配合,不得以成本控制因素拒绝; |
(略)
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动物转基因技术虚拟仿真模块 | 1 | 套 | 办公软件 |
品牌 | 莱医特 |
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型号 | 按参数定制 |
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技术参数及配置要求 | * 、项目描述 本项目以EGFP为靶基因制备转基因小鼠,旨在融合分子生物学、细胞生物学、基因工程与胚胎工程等学科知识,促进学生掌握转基因小鼠制备的原理与操作过程,培养学生观察能力与思考创造力。 虚拟实验 (略) 流畅, (略) 景将让您可以切身感受体验其中身临其境的奇妙过程。本软件做到融实用性、教育性、娱乐性和趣味性为 * 体的教学方式,要求学生通过在计算机上的操作来学到相关专业技能和知识,系统既好玩、又有趣,还能“涨知识”,提高学生学习兴趣。学生可以虚实结合,反复训练和加强记忆,从而提高学生创新思维及实操技能能力。 * 、项目总体要求 2.1、技术要求: 系统采用B/S架构;PC端支持win7、win * 在内的主流操作系统; (略) 稳定,安全性高。 2.2、设备配置要求: 系 (略) 于CPU不低于i5、内存不低于4G、拥有2G以上独立显卡的台式或笔记本电脑上。 * 、系统性能 1、稳定性: (略) 前采用回归测试、功能测试、压力测试、负载测试、性能测试、易用性测试、安装与反安装测试、回复测试、安全性测试、兼容性测试、内存泄漏测试、比较测试Alpha测试和Beta测试。要求系统能 (略) 稳定,具有较高的系统稳定性。 2、安全性:必须保证系统的安全性,有效解决安全漏洞问题,同时要具有对开发中发现的安全漏洞有进 * 步的改进和完善的功能, 以确保系统安全、可靠,不具有、不传播恶性、破坏性、攻击性的程序代码,自身 (略) 恶性程序攻击,不具有明显漏洞。 3、流畅性:确保系统展示时过程流畅,平滑连续,响应及时。 4、易用性和 (略) 性:系统内嵌提醒帮助机制,在各个子界面中,设计文本提示框等信息。软件采用面向对象设计,操作者通过对话框、菜单等简便的操作,能 (略) 应用;U I界面设计:菜单栏、视图窗口、属性窗口、对话框,满足虚拟实验管理和操作的需要。 * 、系统设计规范 (1)GB 点击查看>> 《计算机软件开发规范》 (2)GB 点击查看>> 《计算机软件产品开发文件编制指南》 (3)GB 点击查看>> 《计算机软件需求说明编制指南》 (4)GB 点击查看>> 《计算机软件测试文件编制规范》 (5)GB/T 点击查看>> 1《软件系统验收规范》 * 、虚拟仿真实验开发内容 ★ * 、提供国家级项目申报页面,可以和实验空间无缝对接数据信息,申报页面包含申报视频、引导视频、 (略) 、项目访问信息、用户使用分数、错误步骤、项目综合评价、申报文档等。 ★ * 、 (略) 现有虚拟仿 (略) 综合管理平台无缝对接数据,包含实验操作记录,实验分数、错误步骤统计等。 ★ * 、项目内容: 1、小鼠超排、交配 ① 小鼠超排 ② 交配老鼠 ③ 检查阴栓,为获取早期胚胎准备 2、体内囊胚获取 拿起 * μl移液器,并调到“ * ”,选择正确的枪头,安装到移液器上。吸取M2培养基,将M2培 (略) 孔培养皿中。重复操作,分别吸取 * 次M2培 (略) 孔培养皿中。打开鼠笼拿出受孕3.5天6周雌鼠,将雌鼠用异氟烷麻醉,进行颈椎脱臼,拿起解剖剪,剪开雌鼠腹腔,剪下雌鼠子宫,放置在干净的纸上。拿起镊子,去掉子宫周围的脂肪组织,将子宫放到 * 个加好M (略) 孔培养皿中。拿起小解剖剪,将两 (略) 剪断。点击1mL注射器,去掉包装袋,点击M2培养基,使用注射器吸取0.5mL备用。拿起弯头镊子, (略) 孔培养皿, (略) 孔培养皿中的子宫。用1mL注射器(已吸好M2培养基)顺着子宫内壁,朝子宫内腔注射M2培养基,冲出胚胎。将含有子 (略) 孔培养皿放在体视镜(带热台)下,拿起吸卵管,在体视镜下,用吸卵管将吸出到 * 个新的加有M (略) 培养皿中(此操作重复两次)。 将换成ES细胞培养基的 * 孔板拿出来放到实验台中,用吸卵管吸起胚胎,将胚胎加到 * 孔板中, * 个胚胎 * 个孔。将加完胚胎的 * 孔板放在培养箱中,出现选择题及评分面板。 3、ES细胞制备 ① 复苏饲养层细胞到 * 孔板 ② 更换ES细胞培养基 ③ 观察(透明带去除) ④ 复苏饲养层细胞到 * 孔板 ⑤ 消化 * 孔板中细胞,重铺到 * 孔板 ⑥ 扩大培养细胞 ⑦ 复苏饲养层细胞到培养皿 ⑧ 更换ES细胞培养基 4、ES细胞电转染 ① 准备待电转的ES细胞 ② 电转Rosa * -EGFP-hygro质粒 ③ 用hygro筛选已导入质粒的ES细胞 ④ 复苏饲养层细胞到 * 孔板 ⑤ 更换电转后的细胞培养基 ⑥ 挑取导入质粒的ES细胞 ⑦ 观察已挑取细胞是否成功表达EGFP ⑧ 扩大培养和冻存 5、EGPF质粒构建 6、 * 倍体制备 点击 * cm培养皿1,把盖子打 (略) 放,拿起 * μL移液器,点击M2培养基,吸取 * μL。点击培养皿1盖子,在盖子中间滴加5滴M2培养基。打开石蜡油,点击培养皿1盖子,倒入石蜡油覆盖M2培养基(不用铺满,覆盖M2培养基液滴即可)。点击 * cm的培养皿2,把盖子打 (略) 放,拿起 * μL移液器 ,点击培养皿2盖子,在盖子中间滴加5滴KSOM培养基,点击打开石蜡油,点击培养皿2盖子,倒入石蜡油覆盖KSOM培养基(不用铺满,覆盖KSOM培养基液滴即可),取2-细胞时期胚胎,拿起 * μL移液器,点击M2培养基,吸取 * μL, (略) 孔培养皿,加入 * μL M2培养基。 拿出受孕1.5天母鼠, (略) 死,将母鼠的输卵管取出,将母鼠输 (略) 培养皿中,用手术剪将母鼠的输卵管剪碎。将中心孔培养皿放置于解剖显微镜下,控制细针,调整胚胎方向,点击按钮,开始电融合细胞,使之成为 * 倍体。用移卵管将胚胎放入 * cm培养皿2(装有KSOM培养基)中的液滴中,洗2次(从 * 个KSOM液滴中转移到新的KSOM液滴中)。点击 * cm培养皿2,将培养皿放入 * ℃培养箱中,在 * ℃培养箱中培养2天,每天观察胚胎,培养至囊胚阶段。出现选择题及评分面板。 7、囊胚移植 选取6-8周龄雌鼠与结扎雄鼠合笼(1:1),第 * 天早上检查交配情况,标记有阴道栓者,将其转移到新的鼠笼,作为代孕鼠。点击电子天平,对 (略) 称量体重。点击烧杯,拿出代孕母鼠,准备注射麻醉。点击1mL注射器,去掉包装袋,点击 * % 的水合氯醛,吸取 * % 的水合氯醛(按5mg/kg的剂量)。点击代孕母鼠,腹腔注射 * % 的水合氯醛麻醉,待代孕鼠完全麻醉后,使用 (略) 被毛,用 * % (略) 擦拭消毒,将 (略) 剪开 * 点,剪开腹膜。从 * 氧化碳培养箱取出囊胚。使用捡卵针吸取胚胎,转移到含有M2培养基的小皿中(不覆盖石蜡油)。使用胚胎移植管吸取胚胎,用镊子小心找到子宫角,划开 * 点小口,迅速将胚胎移植管插入其中,打入胚胎。用同 (略) 另 * 侧子宫的胚胎移植。用缝合针和缝合线,将创口缝合好。将小鼠保温安放。待其苏醒,继续饲养。待代孕鼠生出的小鼠生长 * - * 天,剪0.3cm尾尖,消 (略) PCR鉴定。出现选择题及评分面板。 8、结扎雄鼠/假孕母鼠 选择6周龄雄鼠, (略) 称量体重。点击1ml注射器,去掉包装袋,点击 * % 的水合氯醛(放到1.5ml离心管内),吸取 * % 的水合氯醛(按5mg/kg的剂量),给雄鼠腹腔注射 * % 的水合氯醛麻醉。待雄鼠完全麻醉后,使用 (略) 被毛,用 * % (略) 擦拭消毒。用手术剪刀沿着腹中线靠近生殖器约1. (略) 开 * 个约为1cm长的开口,用弯头眼科镊子在腹腔内两侧各找到白色的脂肪垫,夹着轻轻往外拉,直到睾丸外露,在睾丸的下方可见输精管。将另 * 个眼科镊子在酒精灯上烧红后夹住输精管,将其烧断。用同样的方法将另 * 侧输精管烧断,用缝合针和缝合线,将创口缝合好。将小鼠保温安放。手术 * 周后,挑2-4只6周龄左右的雌鼠与之合笼。 * 个月后雌鼠未见怀孕则标志手术成功。出现选择题及评分面板。 9、小鼠鉴定 * 、原核胚胎获取 注射hCG后 * - * 小时, (略) (略) 死。点击小鼠,将整个鼠体放入 * %酒精中浸泡1分钟。点击烧杯,将浸泡后的母鼠取出,放置于手术台中。用无菌镊子 (略) 皮肤,用手术剪刀剪开皮层,剪出 * 个切口,用镊子撕扯皮肤使肌肉层暴露,并将皮层往两侧放置,用无菌手术剪刀剪开肌肉层,暴露出卵巢和输卵管。用手术剪刀剪开卵巢周围连接(此时不要损坏输卵管),再剪断输卵管与子宫的连接。点击 * mm培养皿(加有M2培养液),将输卵管放入培养皿中,将含有输卵管的小皿转移到体式显微镜下。体式显微镜旁边有热台,热台上准备1个小皿,分别盛装有M2培养基。使用含4#针头的注射器( (略) (略) 理)吸取M2液体,在体式显微镜下将针头插 (略) 开口内,缓缓将M2液体也冲入输卵管中。此时,原核胚胎已被冲入小皿中。 使用捡卵针(直径 点击查看>> um)将原核胚胎转移到 * ul的M2操作液中(小皿中有3个粉红色的 * ul液滴,周围用透明的石蜡油覆。从第 * 个液滴转移到第 * 个液滴,再转移到第 * 个液滴,即洗涤3次),使用捡卵针将原核胚胎转移到含透明质酸酶的EP管中,停留约 * s。拿起 * μL移液器,选择正确的枪头,安装到移液器上。使用 * ul量程移液器轻轻吹打几下,然后使用移液器将EP管中的液体转移到含有2ml M2操作液的小皿中。将颗粒细胞去除的原核胚胎(在去除前,原核胚胎周围有2-3层的颗粒细胞包围)使用捡卵针转移到新的含有 * ul M2操作液的液滴中(小皿中有3个粉红色的 * ul液滴,周围用透明的石蜡油覆。从第 * 个液滴转移到第 * 个液滴,再转移到第 * 个液滴,即洗涤3次)。出现选择题及评分面板。 * 、原核胚胎DNA注射 点击- * 冰箱,拿出原核注射DNA离心管,对原核注射DN (略) 简短离心,离心结束,拿出原核注射DNA离心管。使用无菌的微量加样器,从含DNA的离心管中吸取5 μL DNA,加入到注 (略) ,给显微操作仪安装上持卵针和注射针。先在显微操作仪左边持针器安装上持卵针,再往右边持针器安装上注射针,并调整好高度和角度,使持卵针和注射针保持在相同位置。拿起 * μL移液器,选择正确的枪头,安装到移液器上,吸取M2培养基,点击中皿(6cm),在皿中央加 * 滴约 * μL (根据情况可以多做几个)。使用石蜡油覆盖整个皿,将中皿转移到显微操作仪的操作台上,使用捡卵针吸取 * - * 枚原核胚胎到液滴中央(避免产生气泡)。 将上 * 步的中皿皿盖移动到显微操作仪的热台上,使用低倍物镜对准 (略) 调焦。然后轻轻落下持卵针,微调位置,直到清晰见到针尖为止。然后轻轻落下注射针,微调位置,直到清晰见到针尖为止,并且和持卵针在同 * 高度。然后将镜头转移到工作放大倍数( * ×),并对持卵针和注射针做细微调整。转到注射针手柄,让其撞击 (略) ,让注射针针尖断裂。旋转注射针手柄,观察到有液体流出即可(断口不宜过大,有液体流出即可)。旋转持卵针手柄,吸住 * 个原核胚胎。旋转注射针手柄,将注射针插入到原核胚胎的雄原核位置(小鼠胚胎能看到 * 个类似于细胞核的区域)(图片),转动手柄,吐出DNA。注射完毕后,将中皿皿盖拿到热台(是单独的热台吗?,显微操作仪上的热台)上,用捡卵针将胚胎从小液滴中吸出,转移到含有M * 培养基的小皿中(小皿中含有2mL M * 培养基,并覆盖石蜡油)(这个小皿,是放到体视显微镜下的吗?对)洗涤 * 次后(即连续转移3个小皿),将最后 * 个培养皿放入 * ℃ (略) 培养, (略) 胚胎移植。出现选择题及评分面板。 * 、原核胚胎移植 选取6-8周龄雌鼠与结扎雄鼠合笼(1:1),第 * 天早上检查交配情况,标记有阴道栓者,将其转移到新的鼠笼,作为代孕鼠。拿出代孕母鼠,对 (略) 称量体重。点击烧杯,拿出代孕母鼠,准备注射麻醉。点击1ml注射器,去掉包装袋。点击 * % 的水合氯醛,吸取 * % 的水合氯醛(按5mg/kg的剂量)。点击代孕母鼠,腹腔注射 * % 的水合氯醛麻醉。待代孕鼠完全麻醉后,使用手术 (略) 被毛,用 * % (略) 擦拭消毒。在后正中线与平肋缘水平线交 (略) ,开 * 个约为1cm长的开口,可见到 * 白色的脂肪垫,用弯头镊子将其拉出,使卵巢外露,卵巢下面即可看到输卵管。从 * 氧化碳培养箱 (略) DNA注射的原核胚胎。使用捡卵针吸取胚胎,转移到含有M2培养基的小皿中(不覆盖石蜡油)。使用胚胎移植管吸取胚胎,用镊子小心撕开输卵管与卵巢包膜,找到输卵管开口,迅速将胚胎移植管插入其中,打入胚胎。用同 (略) 另 * 侧输卵管的胚胎移植。用缝合针和缝合线,将创口缝合好。将小鼠保温安放。待其苏醒,继续饲养。待代孕鼠生出的小鼠生长 * - * 天,剪0.3cm尾尖,消 (略) PCR鉴定。出现选择题及评分面板。 * 、原核注射DNA制备 * 、XR编辑器 1)场景库:预置了实验室,野外,海洋 (略) 景; 2)模型库:预置了家具,植物,动物,实验器材,园林建筑,动漫角色等各种模型,支持通用3D模型格式导入; 3)材质库:预置了金属,高光,漫反射等常用材质; 4)预览功能: (略) 景前,可对模型和模型 (略) 预览,支持 * 维旋转查看,动画播放; 5)场景窗口:支持模型的自由搭建,内置移动,旋转,缩放,吸附,视图切换,镜头调节,复制,删除等工具; 6)场景图层: (略) 有物体按树形 (略) 景图层中,支持增删改,显示隐藏等操作; 7)动画: (略) 景物体添加碰撞盒,自定义旋转,位移,缩放。支持碰撞事件; 8)笔刷工具:选中笔刷工具和模型,自由画出路径,会在路径上批量添加模型; 9)可视化指令编程:在逻辑轴上组合各类控制指令,即可实现传统编程才能实现的交互功能。 |
售后服务 | (略) 点:本地( (略) );电话支持:7x * 小时;服务年限:5;服务时限:报修后 * 小时;项目制作过程中, * 方有权根据制作实际情况适当调整技术流程,中保企业须予以配合,不得以成本控制因素拒绝; |
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