生物制药虚拟仿真系统采购（JJ22000756）成交结果公告
生物制药虚拟仿真系统采购（JJ22000756）成交结果公告
| 项目名称 | 生物制药虚拟仿真系统采购 | 项目编号 | JJ******** |
|---|---|---|---|
| 公告开始日期 | 166*****04000 | 公告截止日期 | 166*****00000 |
| 采购单位 | 东北大学 | 付款方式 | 【贴息贷款项目专用】货物安装调试完成并经甲方验收合格后支付全部款项。 |
| 联系人 | 中标后在我参与的项目中查看 | 联系电话 | 中标后在我参与的项目中查看 |
| 签约时间要求 | 成交后1天 | 到货时间要求 | 签约后7天 |
| 预 算 | ******.0 | ||
| 收货地址 | 辽宁省沈阳市浑南区创新路195号 | ||
| 供应商资质要求 | 符合《政府采购法》第二十二条规定的供应商基本条件 | ||
| 采购商品 | 采购数量 | 计量单位 | 所属分类 |
|---|---|---|---|
| 生物制药虚拟仿真系统 | 5 | 套 | 办公软件 |
| 品牌 | 南京莱医特 |
|---|---|
| 型号 | 按参数定制 |
| 品牌2 | 无 |
| 型号 | 无 |
| 品牌3 | 无 |
| 型号 | 无 |
| 预算 | *****.0 |
| 技术参数及配置要求 | 【贴息贷款项目专用】违约责任: 供应商参与报价即认为完全同意以下全部内容。本项目需要使用学校专用合同范本，以下均称项目中购置物资为“本合同产品”，称供应商为乙方。鉴于在本合同产品采购过程中，乙方已清楚了解，甲方采购本合同产品的资金来源为财政贴息贷款，贷款支付条件即甲方向乙方的付款条件为签订书面合同。同时，该贷款享受两年年息2.5个百分点的财政贴息，而办理财政贴息的条件为作为产品采购款的贷款在2022年底前已支付且乙方已提供全额合法有效发票。 如乙方未按期向甲方提供发票导致甲方未享受财政贴息的，乙方应向赔偿甲方本合同采购款为基数的两年财政贴息损失。如因乙方未按约定提供发票导致贷款行收回贷款的，甲方有权解除合同，乙方应返还甲方已支付的合同款，并向甲方支付合同金额20%的违约金。（一）项目描述品牌：南京莱医特。项目按如下内容制作。本产品运用3D虚拟仿真技术，现代三维图形图像技术，把枯燥的书本讲解变成鲜活的模型，它以最新的虚拟现实信息技术为依托，以3D交互体验、互动性为手段，依据符合国家关于信息化系统建设的标准规范开发完成的虚拟现实仿真系统。通过三维化实现虚拟仿真实验Real-Time PCR检测小鼠胚胎不同发育阶段特异性基因的表达的仿真过程，让学生可以通过虚拟操作完成整个实验步骤，整体虚拟实训过程相比现实实训具有更加安全高效的优点。学生可以快速掌握本实验操作流程：小鼠的超数排卵、小鼠植入前胚胎各发育阶段的观察、反转录反应、胚胎材料的收集、小鼠超排卵子的体外受精、测量RNA浓度、提取胚胎总RNA。通过虚拟实验项目学生可自由在实验室中实习，学习Real-Time PCR检测小鼠胚胎不同发育阶段特异性基因的表达方法及注意事项。虚拟实验项目画面运行流畅，逼真的虚拟场景将让您可以切身感受体验其中身临其境的奇妙过程。本软件做到融实用性、教育性、娱乐性和趣味性为一体的教学方式，要求学生通过在计算机上的操作来学到相关专业技能和知识，系统既好玩、又有趣，还能“涨知识”，提高学生学习兴趣。学生可以虚实结合，反复训练和加强记忆，从而提高学生创新思维及实操技能能力。（二）项目总体要求2.1、技术要求：系统采用B/S架构；PC端支持win7、win10在内的主流操作系统；软件运行稳定，安全性高。2.2、设备配置要求：系统可流畅运行于CPU不低于i5、内存不低于4G、拥有2G以上独立显卡的台式或笔记本电脑上。（三）系统性能1、稳定性：系统出厂前采用回归测试、功能测试、压力测试、负载测试、性能测试、易用性测试、安装与反安装测试、回复测试、安全性测试、兼容性测试、内存泄漏测试、比较测试Alpha测试和Beta测试。要求系统能够长时间运行稳定，具有较高的系统稳定性。2、安全性：必须保证系统的安全性，有效解决安全漏洞问题，同时要具有对开发中发现的安全漏洞有进一步的改进和完善的功能，以确保系统安全、可靠，不具有、不传播恶性、破坏性、攻击性的程序代码，自身不易受到外部恶性程序攻击，不具有明显漏洞。3、流畅性：确保系统展示时过程流畅，平滑连续，响应及时。4、易用性和友好性：系统内嵌提醒帮助机制，在各个子界面中，设计文本提示框等信息。软件采用面向对象设计，操作者通过对话框、菜单等简便的操作，能够对软件进行应用；U I界面设计：菜单栏、视图窗口、属性窗口、对话框，满足虚拟实验管理和操作的需要。（四）系统设计规范（1）GB8566-88《计算机软件开发规范》（2）GB8567-88《计算机软件产品开发文件编制指南》（3）GB9385-88《计算机软件需求说明编制指南》（4）GB9386-88《计算机软件测试文件编制规范》（5）GB/T*****-2011《软件系统验收规范》（五）虚拟仿真实验开发内容5个模块分别包含如下内容之一：一．小鼠的超数排卵1. 进入SPF级鼠房（更衣）（投标时提供SPF级鼠房截图）1.1 下午21:00，刷卡进入缓冲间1，洗手消毒烘干后，进入更衣室，更换实验鞋，实验服，口罩1.2 穿过缓冲间2，进入清洁走廊。2. 小鼠腹腔注射PMSG2.1 选择进入不同小鼠品系的培养间，昆明小鼠、ICR小鼠（以上为封闭群）；C57BL/6（黑）、BABL/c（白）（以上为近交系）。（注：此处可以让学生选择小鼠品系，考核学生对于近交系小鼠的选择）2.2使用1mL注射器吸取浓度为100U/mL的PMSG，将针头向上，轻弹注射器后，推动注射器排出空气。2.3 从鼠笼中取出一只雌性C57BL/6小鼠，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，一只手抓住小鼠的尾巴向后拉，另一只手的大拇指和食指捏住小鼠颈背部皮毛，并用无名指及小指固定其尾部和后肢，腹部向上，头呈低位。2.4 取事先吸取好液体的注射器针尖平面朝上，使针头与小鼠腹部约成45度角，从下腹部处刺入腹腔，针头刺入的速度要快，刚开始刺时会有一种明显的抵抗力，那是因为鼠皮具有韧性，后来突然会有一种抵抗力消失的感觉，此时，可以前后抽送一下注射器，感觉阻力较小时，说明针头已刺入腹腔内，随后就可以开始进药，每只小鼠注射PMSG 0.05mL（5U）。注射完毕后，轻轻将针头旋转一定角度，缓慢拔出针头，防止药液外漏。2.6 将注射完的小鼠放回鼠笼，每3-5只雌鼠置于一个鼠笼，放回培养间。3.离开SPF级鼠房刷卡，穿过缓冲间2，进入更衣室，更衣，进入缓冲间1，洗手消毒烘干，出鼠房。4. 小鼠腹腔注射HCG第三天20:00（注射PMSG 46-48小时后），按照上述1-3的步骤，向雄性小鼠腹腔注射HCG 0.05mL（5U）。二、小鼠超排卵子的体外受精1. 受精皿与培养皿的准备1.1 注射hCG的当天下午18：00，如下准备受精皿和培养皿[BD 35mm (60mm)Petri Dish,cat.no:******（******）]。a．新鲜精子皿：1mL HTF（Millipore ，cat no. MR-070-D）。b．卵子采集皿：1mL HTF。c．受精皿：每个35mm Petri Dish制作8个50uL HTF受精滴。d．清洗用培养皿（与受精皿中的受精滴数量相同）：35mm培养皿中准备3个50uL HTF的液滴和3个50uL KSOM-AA（Millipore ，cat no. MR-106-D）的液滴。e．发育培养皿：在35mm培养皿中准备8个50uL的KSOM-AA液滴。1.2 用胚胎测试过的并经气体平衡的石蜡油（Sigma，cat.no:M8410）覆盖于上述培养皿的培养液上。2. 小鼠精子的体外获能2.1第4天上午8:00（注射hCG12～13h后），颈椎脱臼法处死雄鼠，用右手抓住鼠尾根部并将其轻微上提，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，用左手拇指、食指用力向下按压鼠头颈部，右手抓住鼠尾根部用力拉向后上方，造成颈椎脱臼，脊髓与脑干断离，动物立即死亡。2.2用酒精棉球将小鼠腹部的皮肤消毒，提起小鼠下腹部的皮肤，用剪子横剪一小口，用手提起切口的一侧，向上撕开。剪开下腹部的肌肉层。（投标时提供此条产品截图）2.3 使用小镊子，将消化道拨向上方，进而提生殖脂肪，将精巢（睾丸）从阴囊中提出，找到附睾尾部，2.4 迅速分离出附睾尾和输精管，尽可能去除脂肪和血管。将它们放入鲜精皿中，用1mL注射器针头将附睾尾切5～7下并用镊子轻轻从输精管中挤出精子。2.5 轻轻地晃动培养皿30s使精子浮游。将培养皿放入37℃，5% CO2培养箱中静置1-1.5h使精子获能。3. 采卵3.1上午9:30（精子获能约1小时后），打开立体显微镜，打开热板，并将温度设定于37℃。将过夜平衡的卵子采集皿（预先加有1mL HTF培养液的35mm培养皿，）置于热板上。3.2 按照2.1-2.2的方法处死超排后的雌鼠，打开小鼠腹腔，用镊子抓住一个子宫角的上部，然后轻轻地把子宫、输卵管、卵巢和脂肪垫拉出体腔，用镊子将输卵管、卵巢和脂肪垫拉伸，再用小剪刀在输卵管和卵巢之间剪开。然后在靠近输卵管的子宫部剪开。3.2将输卵管和带着的少量子宫部分转移到一个卵子采集皿中。刚排出的卵子由卵丘细胞包围，可以在输卵管壶腹部发现，排卵12h后壶腹部膨大，可以在20倍的立体显微镜下很容易地观察到。3.3、用镊子夹住靠近肿胀的漏斗部的输卵管并使之紧紧靠在培养皿的底部，用1mL注射器针头撕破卵子所在的输卵管壶腹部，将卵丘细胞包围的卵丘卵母细胞复合体（COCs）释放出来。如果COCs不能自己释出，就用镊子轻轻地把它们挤出来。如果它们黏附到输卵管的外部，就将输卵管在透明质酸酶溶液中放置几分钟。卵子会在透明质酸酶溶液中慢慢脱掉卵丘细胞而被释放出来。如果COCs黏附到镊子上，只要将镊子拿出皮氏培养皿，这些COCs就会由于培养液表面的张力而被留在培养液中。4. 体外受精4.1 将获能精子悬液整倍稀释，利用精子质量分析仪测定精子的活力与浓度。评价精子的形态与活力，并调整精子浓度，使受精时精子的终浓度要在(1～2.5)×106个/mL之间。4.2 将过夜平衡的受精皿从培养箱中取出，并置于热板上，用移液器在每个受精皿的受精滴中加入新鲜的获能精子（通常为10uL．如果精子浓度较低则加入量增大）。4.3 点燃酒精灯，取出一根玻璃管，一侧用手固定，另一侧用镊子夹住，置于酒精灯外焰处加热，期间缓慢扭动玻璃管的加热点，党加热至合适程度时，快速离开火焰，并向玻璃管两侧拉伸，并使其细管内径约等于100μm-120μm左右。将砂轮在火焰上短暂加热消毒后，在玻璃管的合适位置（距管道变径处3-5cm处）锉出划痕，并轻轻用力截断玻璃管。取100μL枪头和胶皮管装配口吸管。4.4 用口吸管将采集的卵子按照20枚/滴的数量移入受精皿的各个受精滴中。（投标时提供此条产品截图）4.5将受精培养皿放入37℃、5%CO2培养箱中静置4～6h。4.6将受精皿从培养箱中取出，用口吸管将卵子依次移入预先平衡好的清洗皿中的3个HTF培养液滴中清洗3次以去掉多余的精子和碎片。与此同时，应观察受精的卵子中两个原核存在与否以及第二极体是否排放。4.7 将确定受精的胚胎用口吸管依次移入清洗皿中的3个KSOM-AA培养液滴中清洗3次，再将它们最后放入胚胎培养皿中的KSOM-AA微滴中继续培养。三．小鼠植入前胚胎各发育阶段的观察第5天：下午18:00观察2细胞胚胎。第6天上午8:00观察4细胞胚胎，下午18:00观察8细胞胚胎。第7天下午18:00观察致密桑椹胚。第8天下午18:00观察囊胚。Real-Time PCR检测小鼠胚胎不同发育阶段特异性基因的表达四、胚胎材料的收集1. 从-20℃冰箱取出分装好的发育液（1.5mL离心管），放到二氧化碳培养箱中预平衡2小时。2. 2小时后，取出ABI微量RNA提取试剂盒(PicoPure？RNA Isolation Kit)中的抽提液（Extraction Buffer，XB），用移液枪扎一个无酶200μL枪头，吸取100μL抽提液到1.5mL的无酶离心管中，放到离心管架上备用。3. 在酒精灯上拉制玻璃管，放到一边备用。4. 将胚胎培养皿从二氧化碳培养箱中取出，放在体视镜的台子上。5. 将玻璃针与口吸管组合。6. 将平衡好的发育液取出，将玻璃针放入，利用虹吸现象，吸取一定体积的发育液。7. 在体视镜下将胚胎吸入口吸管，液体尽可能地少，再转移到刚才加了100μL抽提液的1.5mL无酶离心管中，离心管盖上写好样品名称，存于-80℃备用。8. 反复上述吸胚操作，依次攒够2-cell（100个以上）、8-cell（100个以上）、桑椹胚（50个以上）、囊胚（20个以上）时期的胚胎。（投标时提供此条产品截图）五、提取胚胎总RNA实验前的准备：佩戴手套、口罩，用RNA酶清除剂（喷雾）将操作台喷一遍。打开固体浴，将温度设定为42℃，等待升温。将存于-80℃的1.5mL无酶离心管的胚胎取出，放到离心管架上，室温下等待液体融化，大约5min。将离心管置于42℃固体浴上，30min。预处理RNA纯化柱：试剂盒中的纯化柱是放在一个收集管中的。用移液枪扎一个无酶1mL枪头，吸取250μL条件液（Conditioning Buffer，CB），加入柱子中，合上盖，室温放置5min，然后打开高速离心机，将纯化柱放入高速离心机，设置转速为*****g，离心1min，然后取出置于离心管架上，用记号笔在管盖上依次写好样品名称，备用。用移液枪扎一个无酶200μL枪头，吸取100μL 70%乙醇（EtOH），加入含有胚胎的离心管中，轻柔地上下吹吸液体，直到液体混匀。用移液枪将上述混合液依次转移到写有对应样品名称的提纯柱子里，合上盖。然后打开高速离心机，将纯化柱放入高速离心机，设置转速为100g，离心2min。离心结束后，迅速重新设置离心机转速为*****g，再次离心30sec。打开高速离心机，将纯化柱取出置于离心管架上，用移液枪扎一个无酶200μL枪头，吸取100μL洗液1（Wash Buffer 1，W1），合上盖。将纯化柱放入高速离心机，设置转速为8000g，离心1min。打开高速离心机，将纯化柱取出置于离心管架上，用移液枪扎一个无酶200μL枪头，吸取100μL洗液2（Wash Buffer 2，W2），合上盖。将纯化柱放入高速离心机，设置转速为8000g，离心1min。再次加入100μL洗液2，*****g离心1min。如果离心后发现柱子中还残留有液体，则再次*****g离心1min。直到柱子中没有液体残留。从试剂盒中取出新的0.5mL的离心管，在管盖上依次写上样品名称。将纯化柱从收集管中取出，放入对应的0.5mL离心管中。将收集管中的液体倒掉，再将该离心管放到一个新的收集管中。用移液枪扎一个无酶200μL枪头，吸取30μL洗脱液（Elution Buffer，EB）滴在柱子中央位置，合上纯化柱的盖，室温孵育1min。（投标时提供此条产品截图）打开高速离心机，将离心管和柱子和收集管一起放入，将离心管的盖子按一定角度放置（否则，可能在离心过程中，盖子被甩掉），1000g离心1min，然后迅速重新设置离心机转速为*****g，再次离心1min。打开高速离心机，取出，仅保留0.5mL离心管，弃纯化柱和收集管。此时若选择进行下一步操作，则将离心管置于-20℃预冷的铝块上。若选择结束实验，则将离心管置于-80℃冰箱，可储存一个月。六、测量RNA浓度打开分光光度计（机器型号thermo nanodrop 2000）及电脑的电源。首先，进行分光光度计的润洗工作。打开分光光度计的检测臂，用移液枪扎一个无酶10μL枪头，吸取2.5μL无酶水，轻轻滴在检测台上，轻轻合上检测臂，然后打开检测臂，用擦镜纸擦去检测台和检测臂上的水珠，然后重复该润洗步骤2次。合上检测臂。打开电脑上的程序，选择“核酸（Nucleic Acid）”，等待机器的初始化，大约10sec。初始化完成后，修改右侧的核酸类型（TYPE）为“RNA”。然后进行空白对照的检测。打开分光光度计的检测臂，用移液枪扎一个无酶10μL枪头，吸取2.5μL洗脱液，轻轻滴在检测台上，轻轻合上检测臂，然后点击电脑程序上的“空白（Blank）”，大约5sec测量完毕。然后打开检测臂，用擦镜纸擦去检测台和检测臂上的水珠。然后轻轻弹动样品离心管底部，保证液体均匀后（但不得有液体溅到壁上），进行样品的检测。打开分光光度计的检测臂，然后用移液枪扎一个无酶10μL枪头，吸取2-cell样品1μL，轻轻滴在检测台上，轻轻合上检测臂，然后点击电脑程序上的“Measure”，大约5sec检测完毕。★此时电脑的程序页面弹出保存文件的窗口，选择合适的文件夹，输入自定义的文件名，进行保存。（投标时提供此条产品截图）此时屏幕下方出现该样品的RNA 浓度和A260/280值，可以将样品的RNA 浓度和A260/280值记录在离心管壁上。然后打开检测臂，用擦镜纸擦去检测台和检测臂上的水珠。然后重复样品测量的步骤，依次完成所有样品的RNA浓度测量。找到刚才刚才保存的测量文件，打开，点击左侧的“导出（Export）”，出现文件保存窗口，选择适当文件夹，输入自定义的文件名，将数据保存为excel文件。用cd拷贝数据。关闭程序。然后按照第2步的步骤，进行分光光度计的润洗工作2次。关闭分光光度计的电源及电脑。七、反转录反应从-20℃冰箱取出反转录试剂盒（TAKARA DRR047A）和预冷的铝块，将试剂盒中的液体依次取出，置于铝块上融化，大约5min。计算1μg 样品RNA对应多少体积RNA溶液。取出4个0.2mL 离心管，盖子上写好样品名称。下面进行第一步，去除基因组DNA反应。每个管中加入2μL的5×gDNA Eraser Buffer，然后加入1μL的 gDNA Eraser，然后加入相应的水，最后加入相应体积的样品RNA。合上盖，用掌上离心机离心10sec，涡旋震荡器震荡混匀，再次用掌上离心机离心10sec。★打开PCR仪，放入离心管，然后关上盖，拧紧，设定程序（投标时提供此条产品截图）结束后，将离心管取出，置于铝块上。此时取一新的离心管，按照下表中4.2倍的用量依次加入液体，配置第二步反应的溶液。用掌上离心机离心10sec，涡旋震荡器震荡混匀，再次用掌上离心机离心10sec。结束了42℃反应后，在的样品离心管中加入10μL上述配置的液体。用掌上离心机离心10sec，涡旋震荡器震荡混匀，再次用掌上离心机离心10sec。放入PCR仪，设定程序合上PCR盖，开始反应。反应结束后取出离心管。此时若选择进行下一步操作，则将离心管置于-20℃预冷的铝块上。若选择结束实验，则将离心管置于-20℃冰箱，可长期储存。八、实时定量PCR反应从-20℃冰箱取出实时定量试剂盒（TAKARA DRR820A）、胚胎cDNA溶液、4个基因的引物和预冷的铝块，置于铝块上融化，大约5min。按照每个基因的每个引物做3管重复，首先在4个1.5mL离心管中分别配置每个胚胎样品4个基因的一个mix液体（14倍 (12)，除去引物），离心混匀。然后在0.2mL离心管中配置每个胚胎样品的一个引物的的3.1倍反应体系（加入引物），离心混匀，按上述体系依次加好4个样品的4个引物，共计16管。16管排序具体用量确定：然后将这个3.1倍的mix液体，按照每管20μL的量分装到8排管的一个孔中，共48管，每个样品的每个引物(14倍体系)，以每管20μL的量依次加入八排管中，每加完3个八排管，就盖上盖。八排管依次在掌上离心机离心后，放回铝块上。打开实时定量PCR仪和电脑，打开程序。选择SYBR green方法。选择基因和样品名称。设置反应程序保存文件后，点击开始（Start），反应大约需要90min。。反应结束后，分析数据。 |
| 售后服务 | 无 |
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